粉體行業在線展覽
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北京易科泰生態技術有限公司
捷克
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347
FluorPen手持式葉綠素熒光儀（固定透明葉夾）
FluorPen手持式葉綠素熒光儀用于實驗室和野外快速測量植物葉綠素熒光參數，具有便攜性強、精確度高、性價比高等特點；雙鍵操作，具顯示屏，可以貯存1000次測量數據，廣泛應用于研究植物的光合作用、脅迫監測、殺蟲劑實驗或變異篩選，還可用于生物檢測，如通過不同植物對土壤或水質污染的葉綠素熒光響應，找出敏感植物作為生物傳感器用于生物檢測。其固定透明葉夾版便于在光照條件下測量葉綠素熒光。
應用領域
適用于光合作用研究和教學，植物及分子生物學研究，農業、林業，生物技術領域等。研究內容涉及光合活性、脅迫響應、農藥藥效測試、突變等。
· 植物光合特性和代謝紊亂篩選
· 生物和非生物脅迫的檢測
· 植物抗脅迫能力或者易感性研究
· 代謝混亂研究
· 長勢與產量評估
· 植物——微生物交互作用研究
· 植物——原生動物交互作用研究
功能特點：
§ 結構緊湊、便攜性強，LED光源、檢測器、控制單元集成于僅手機大小的儀器內，重量僅180g
§功能強大，是葉綠素熒光技術的高端結晶產品，具備了大型熒光儀的所有功能，可以測量所有葉綠素熒光參數
§內置了所有通用葉綠素熒光分析實驗程序，包括兩套熒光淬滅分析程序、3套光響應曲線程序、OJIP–test等
§高時間分辨率，可達10萬次每秒，自動繪出OJIP曲線并給出26個OJIP–test參數
§可配備GPS模塊，輸出待時間戳和地理位置的葉綠素熒光參數圖表
§FluorPen專業軟件功能強大，可下載、展示葉綠素熒光參數圖表，還可實現遙控功能
§配置靈活，可選配藍牙通訊或USB通訊，標配葉夾為固定式，還可選配分離葉夾式（適合于白天多個葉夾暗適應）、透明葉夾式（無需暗適應的情況下）等
§可選配野外自動監測式FluorPen，防水防塵設計
工作原理
利用調制式熒光測量技術，采用LED光源，選擇儀器內置的給光方案測量并計算葉綠素熒光的各種參數。
實驗過程和測量參數
· Ft：瞬時葉綠素熒光、暗適應完成后Ft＝Fo
· QY：光量子效率，表示光系統II 的效率，等于Fv/Fm(暗適應完成的樣品)或Fv’/Fm’ (光適應完成的樣品)
· OJIP：葉綠素熒光瞬時OJIP曲線是反應光合作用過程中植物生理時間過程的重要信號。
· NPQ：非光化學淬滅，表示光合作用中葉綠素吸收光能后以熱形式散失掉的部分。
· 光曲線：Qy對不同光強的適應曲線。
· PAR測量：可在熒光儀上顯示PAR值，可計算20次檢測值的平均。
· 可選配GPS模塊
技術參數
測量參數包括F0、Ft、Fm、Fm’、QY_Ln、QY_Dn、NPQ、Qp、Rfd、PAR、Area、Mo、Sm、PI、ABS/RC等50多個葉綠素熒光參數，及3種給光程序的光響應曲線、2種熒光淬滅曲線、OJIP曲線等
OJIP–test時間分辨率為10μs（每秒10萬次），給出OJIP曲線和26個參數，包括F0、Fj、Fi、Fm、Fv、Vj、Vi、Fm/F0、Fv/F0、Fv/Fm、Mo、Area、Fix Area、Sm、Ss、N、Phi_Po、Psi_o、Phi_Eo、Phi–Do、Phi_Pav、PI_Abs、ABS/RC、TRo/RC、ETo/RC、DIo/RC等
3種給光程序光響應曲線，20多個葉綠素熒光參數
2種熒光淬滅曲線，20多個參數
PAR傳感器：讀數單位μmol(photons)/m2.s，可顯示讀數，檢測范圍400-700 nm
測量光：光強可調
光化學光：0–1000μmol(photons)/m2.s可調
飽和光：0–3000μmol(photons)/m2.s可調
光源：標準配置藍光470nm，可根據需求配備不同波長的LED光源
檢測器：PIN光電二極管，697–750nm濾波器
尺寸大小：超便攜，只有手機大小，300px×142.5px×75px，重量僅約180g
存貯：容量4Mb，可內存100000數據點
顯示：2×8字符液晶顯示屏，雙鍵操作，待機5分鐘自動關閉
供電：4節AAA電池可持續使用70小時
工作條件：0–55℃，0–95%相對濕度（無凝結水）
存貯條件：-10–60℃，0–95％相對濕度（無凝結水）
下載方式：可選配藍牙或USB
FluorPen軟件，用于數據下載、分析和圖表顯示
備選GPS定位模塊
操作軟件與實驗結果
產地：捷克
參考文獻
1. Ptushenko V.V. et al. (2013): Biosystems (in press).
2. Samoilova O.P. et al. (2011): Biosystems 105 (1): 41-48.
3. Frolec J. et al. (2010): Plant Cell Rep. 29: 705–714.
4. Ruiz-Sanchez M. et al. (2010): J. Physiol. 167 (11): 862-869.
5. Fernandez-Marin Becerril J.M. et al. (2010): Planta 231: 1335–1342.
6. Harding S.A. et al. (2009): J. Exp. Botany 60 (12): 3443-3452.
7. Kuvykin I.V. et al. (2009): Cell Biophysics 54 (4): 455-464.
8. Macek P. et al. (2009): J. Exp. Botany 60 (12): Acta Oecologica 35: 778–785.
9. Rosescu M.R. et al. (2009): Annals， Food Science and technology 10: 115-119.
10. Zhang M. et al. (2009): Ecology and Environmemtal Sciences 18 (6): 2272-2277.
11. Woo N.S. et al. (2009): Plant methods 4 (27).
12. Klem K. and Bajerova E. (2008): AgEng 2008 Conference， Hersonissos， Crete.
附：OJIP參數及計算公式
Bckg = background
Fo: = F50μs; fluorescence intensity at 50 μs
Fj: = fluorescence intensity at j-step (at 2 ms)
Fi: = fluorescence intensity at i-step (at 60 ms)
Fm: = maximal fluorescence intensity
Fv: = Fm - Fo (maximal variable fluorescence)
Vj = (Fj - Fo) / (Fm - Fo)
Fm / Fo = Fm / Fo
Fv / Fo = Fv / Fo
Fv / Fm = Fv / Fm
Mo = TRo / RC - ETo / RC
Area = area between fluorescence curve and Fm
Sm = area / Fm - Fo (multiple turn-over)
Ss = the smallest Sm turn-over (single turn-over)
N = Sm . Mo . (I / Vj) turn-over number QA
Phi_Po = (I - Fo) / Fm (or Fv / Fm)
Phi_o = I - Vj
Phi_Eo = (I - Fo / Fm) . Phi_o
Phi_Do = 1 - Phi_Po - (Fo / Fm)
Phi_Pav = Phi_Po - (Sm / tFM); tFM = time to reach Fm (in ms)
ABS / RC = Mo . (I / Vj) . (I / Phi_Po)
TRo / RC = Mo . (I / Vj)
ETo / RC = Mo . (I / Vj) . Phi_o)
DIo / RC = (ABS / RC) - (TRo / RC)
